荧光定量RT-PCR检测法

　　RT-PCR是将RNA反转录（RT）和以反转录产物cDNA为模板的聚合酶链式扩增（PCR）相结合的技术。首先经反转录酶的作用从RNA合成cDNA，再以cDNA为模板，扩增合成目的DNA片段。RT-PCR技术灵敏而且用途广泛，可用于检测细胞中基因的表达水平，细胞中RNA病毒的含量和直接克隆特定基因cDNA序列等研究。荧光定量RT-PCR就是通过对PCR扩增反应中每一个循环产物荧光信号的实时检测从而实现对起始模板定量及定性的分析。在实时荧光定量PCR反应中引入了一种荧光化学物质，随着PCR反应的进行，PCR反应产物不断累计，荧光信号强度也等比例增加。每经过一个循环，收集一个荧光强度信号，这样我们就可以通过荧光强度变化监测产物量的变化，从而得到一条荧光扩增曲线图。[1]

　　在荧光扩增曲线上人为设定的一个值，为了便于对所检测样本进行比较，它可以设定在荧光信号指数扩增阶段任意位置上，一般这个阈值是以PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号（baseline）,荧光域值的缺省设置是 3-15 个循环的荧光信号的标准偏差的 10 倍。如果检测到荧光信号超过阈值被认为是真正的信号。

　　每个反应管内的荧光信号到达设定的阈值时所经历的循环数被称为CT 值。

　　荧光化学

　　RT-PCR 的化学原理包括探针类和非探针类两种，探针类是利用与靶序列特异杂交的探针来指示扩增产物的增加，非探针类则是利用荧光染料或者特殊设计的引物来指示扩增的增加。前者由于增加了探针的识别步骤，特异性更高，但后者则简便易行。

　　1、荧光染料（SYBR Green I ）

　　SYBR Green I 是一种结合于小沟中的双链 DNA 结合染料。与双链 DNA 结合后，其荧光大大增强。这一性质使其用于扩增产物的检测非常理想。在 PCR 反应体系中，加入过量 SYBR 荧光染料， SYBR 荧光染料特异性地掺入 DNA 双链后，发射荧光信号，而不掺入链中的 SYBR 染料分子不会发射任何荧光信号，从而保证荧光信号的增加与 PCR 产物的增加完全同步。由于它与所有的双链 DNA 相结合，不必因为模板不同而特别定制，因此设计的程序通用性好。

　　2、荧光探针（TaqMan 探针 ）

　　TaqMan 探针是一种寡核苷酸探针，它的荧光与目的序列的扩增相关。它设计为与目标序列上游引物和下游引物之间的序列配对。荧光基团连接在探针的 5’末端，而淬灭剂则在 3’末端。当完整的探针与目标序列配对时，荧光基团发射的荧光基因与 3’端的淬灭剂接近而被淬灭。但在进行延伸反应时，聚合酶的 5’外切酶活性将探针进行酶切，使得荧光基团与淬灭剂分离。随着扩增循环数的增加，释放出来的荧光基团不断积累。因此荧光强度与扩增产物的数量呈正比关系。

　　即反转录和PCR扩增在同一管内完成， 有助于减少污染，灵敏度更高

　　即反转录和PCR扩增分两步进行，首先从RNA模板反转录得到cDNA，得到的cDNA再进行一次或多次不同的PCR反应。

　　一步法更方便，且可防止在管与管之间转换过程中污染样品，可适用于大量样品分析或定量PCR。两步法在选择聚合酶和引物时具有更大的灵活性，同时可由一次反转录样品获得多个遗传信息。陈阳婷等在研究一步法RT-PCR和两步法RT-PCR对马铃薯病毒诊断研究的比较中得出，两步法RT-PCR具有较高的灵敏性，但这两种方法均可快速、简便、有效地诊断马铃薯病毒。

　　主要包括病原微生物检测、病原体检测、基因病诊断、传染病检测和病变检测等。

　　分子生物学上RT-PCR应用相当广泛，包括基因转录检测（同一基因在不同组织的表达差异，如药物处理、物理处理、化学处理等），特定基因在不同时期的表达差异等。

　　SNP分析及深入应用。