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  • 两种免疫组化方法之SABC法与SV法比较(免疫组化,生物素,亲和素,二抗,缓冲液)

    文/ 发布于2017-11-20 浏览次数:2013

      SABC法:ABC代表的是亲和素-生物素-过氧化物酶复合物。利用抗生物素分别连接生物素标记的第二抗和生物素标记的酶。SABC(链霉亲和素生物素过氧化物酶复合物)就是StreptAvidin Biotin Complex的英文缩写。这一方法集中体现了目前最先进的免疫组化 所必必具备的高敏感性、特异性及操作快速、简便的所有特征。

      基本原理:亲和素(Avidin)存在于鸡蛋中,分子 量67000。是一种碱性蛋白质,具有对生物素近乎于共价键的结合力。链霉亲和素是一种从链霉菌(Streptomyces Avidinii)培养物中所提取的蛋白质,分子量47000,不含糖链,等电点IP=6.0-6.5。和亲和素一样,也有四个生物素结合位点,亲和力高达10-15M。和亲和素相比,链霉亲和素更为完美。现在经过改进的亲和素等电点IP可以达到7.0,明显地消除了原碱性蛋白特征所引起的非特异性吸附。

      生物素是一种水溶性维生素(即维生素H),分子 量244。生物素活化后,可以标记抗体和酶而不影响其活性。链霉亲和素—酶复合物可以起到放大信号的作用,这是SABC具有高度敏感性的基础。

      SV(Super Vision)两步法:是用聚合标记方法将过氧化物酶连接到二抗上,形成类似于章鱼的超大分子抗体-酶聚合物,替代传统方法中的二抗和三抗。这种聚合物拥有强大的信号放大能力,同时有很强的组织细胞渗透力,经检测其灵敏度高于同类产品,特别是针对核抗原 ,其渗透性特别强,适合免疫组化的应用。此系列检测试剂与传统的三步法比较具有简单,快速,高敏感,低背景等特点。

      现对这两种方法进行比较:

      一.材料

      所选试剂:

      即用型SABC(过氧化物酶)试剂盒(博士德货号SA1021,SA1022)

      即用型SV(HRP辣根过氧化物酶)试剂盒(博士德货号SV0001,SV0002)

      DAB(黄色,博士德货号AR1022)

      Mayor`s苏木素(博士德货号AR0005)

      所选一抗:

      KCA3.1(BA1788);PCNA(BM0104);Vimentin(BM0135)

      注:抗体来源均为博士德公司

      所选组织片:乳腺癌石蜡切片,肠癌石蜡切片,切片厚度为5微米

      二.操作步骤

      SABC法:

      1.切片脱蜡至水

      2.新鲜配置3%H2O2,室温10分钟,灭活内源性酶,然后用蒸馏水冲洗2分钟三次

      3.微波修复:将切片放入盛有PBS缓冲液(PH7.2-7.6)的杯子中,在微波炉里加热煮沸,微波炉中静置5分钟,拿出室温冷却6分钟,再微波续热至沸腾后完全室温冷却

      4.滴加5%BSA封闭液,37℃反应30分钟。甩去多余液体,不洗

      5.滴加一抗,4℃反应过夜。所配一抗的浓度为1μg/ml

      6.PBS缓冲液(PH7.2-7.6)洗10分钟×3次,滴加生物素化二抗IgG(抗兔或抗鼠)37℃反应30分钟

      7.PBS缓冲液(PH7.2-7.6)洗10分钟×3次,滴加试剂SABC,37℃反应30分钟,PBS洗30分钟×3次

      8. DAB室温显色,镜下控制反应时间,蒸馏水洗涤

      9. 滴加苏木素轻度复染60秒,蒸馏水洗涤后浸入饱和Na2HPO4溶液中2分钟,取出后洗涤,37℃恒温箱干燥过夜,中性树胶封片。

      SV法:

      1.切片脱蜡至水

      2.新鲜配置3%H2O2,室温10分钟,灭活内源性酶,然后用蒸馏水冲洗2分钟三次

      3.微波修复:将切片放入盛有PBS缓冲液(PH7.2-7.6)的杯子中,在微波炉里加热煮沸,微波炉中静置5分钟,拿出室温冷却6分钟,再微波续热至沸腾后完全室温冷却

      4.滴加5%BSA封闭液,37℃反应30分钟。甩去多余液体,不洗

      5.滴加一抗,4℃反应过夜,所配一抗的浓度为1μg/ml

      6.PBS缓冲液(PH7.2-7.6)洗10分钟×3次,滴加HRP标记二抗IgG (抗兔或抗鼠)37℃反应30分钟,PBS缓冲液(PH7.2-7.6)洗30分钟×3次

      7.DAB室温显色,镜下控制反应时间,蒸馏水洗涤

      8. 滴加苏木素轻度复染60秒,蒸馏水洗涤后浸入饱和Na2HPO4溶液中2分钟,取出后洗涤,37℃恒温箱干燥过夜,中性树胶封片。

      四.结论

      SABC法的特点:

      1.稳定性好:链酶亲和素结合生物素的亲和常数是抗原结合抗体反应的百万倍,二者结合形成复合物的解离常数很小。因此,SABC法在实际应用中,稳定性高,减少了操作误差,提高了检测的精确度

      2.特异性高:链酶亲和素与生物素间的结合具有极高的亲和力,其反应呈高度特异性。因此,SABC法的多级放大作用不仅可以提高检测的灵敏度,同时还避免了非特异性干扰

      3.高敏感性:生物素容易与蛋白质和核酸类等生物大分子结合,形成生物素衍生物结构,该结构具有保持大分子物质的原生物活性功能,同时,每个链酶亲和素分子有四个生物素结合部位,可以多价形式同时结合生物素化的大分子衍生物和酶标记物。因此,SABC法具有多级放大作用,使其在免疫组化实验时大大地提高检测方法的灵敏度

      SV法的特点:

      1.背景染色低:由于不用亲和素,避免了内源性生物素干扰,减少了假阳性、降低了背景染色

      2.操作简便快速:仅需进行两次抗体孵育,更为简单、快速

      3.核抗原染色强:多聚酶紧密连接在免疫球蛋白分子上,由于没有惰性多聚物骨架总体分子量相对较小,克服了大分子复合物穿透力弱、核抗原不易染色的缺点

      4.敏感性较高:显色结果可以达到比较满意的效果

      总结上述特点,SABC法与SV法各有优势,可根据自身的实验条件选取合适的实验方法

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